密理博超濾離心管的常見問題與解答：
一：超濾離心管的膜材質是什么？
密理博超濾離心管的膜材質為默克密理博特有的Ultracel再生纖維素膜，生產工藝嚴格，截留分子量明確而精準，蛋白吸附損失*小。
二：如果要用超濾離心管的方法分離兩種蛋白，那么這兩個蛋白的大小需要相差多少？
按照經驗，建議兩個蛋白的分子量要相差一個數量級（10倍）
三：密理博超濾離心管可以用于病毒濃縮嗎？
可以。對于慢病毒推薦Amicon Ultra 100KDa；對于腺病毒推薦Amicon Ultra 50KDa。具體的操作步驟可以參考病毒濃縮純化試劑盒FTLV00003和 FTAV00003的產品使用說明書。
四：密理博超濾裝置是否可以用于高壓**？
Amicon Ultra都是采用熱封設計，不可以用于高壓高溫**。
五：超濾離心管可以用酒精****嗎？
Amicon Ultra與70%乙醇是兼容的中，但是對**處理的具體方法沒有做相關的測試，所以無法提供更進一步的參考信息。
六：超濾離心管含不含RNA酶？
不保證超濾離心管不包含RNA酶，建議用0.1%DEPC在37度浸泡2小時，以完全滅活RNA酶；殘留的DEPC可以用Milli-Q超純水洗滌除去。
七：用超濾離心管去除去污劑是有什么需要注意的嗎？
去污劑因其獨特的性質，當濃度大于臨界微團濃度（Critical Micelle Concentration、CMC）時，去污劑分子會聚集形成微團而改變分子構象，這有可能會影響去污劑的去除效果，具體的操作步驟請垂詢默克密理博技術支持。
八：蛋白在濃縮時出現了沉淀，如何改進？
蛋白濃縮過快或者過度濃縮都有可能引起蛋白沉淀。建議蛋白濃縮后的*終濃度不超過20mg/ml。對于對濃縮速度敏感而容易沉淀的蛋白，建議的方法是1）離心力降為推薦離心力的30%-50% 2）改用截留分子量更大的超濾管（如原本選用10K，此時可以選擇30K） 3）在濃縮過程中取出超濾管，用槍頭反復吹吸幾次后再繼續濃縮。
九：濃縮后發現濃縮液中沒有目的蛋白，可能的原因有哪些？
首先，Amicon Ultra超濾管的蛋白*低起始濃度為25ug/ml。請確保樣本的起始濃度大于這個濃度。其次，如果問題仍然出現，請不要丟棄樣本濾過液以便用于分析可能的原因：
1）如果目的樣本在過濾液中，那么請排查 ：a）是否選擇了合適截留分子量的超濾管（目的蛋白分子量的1/2或者1/3） b）使用的離心力是否在限定范圍內？如果使用的是rpm，請換算成相應的g離心力。c）離心機*近是否有校準過？d）是否**嘗試這個蛋白？如果能確保用同樣的超濾管對其它蛋白成功操作的話，那么有可能是這個目的蛋白的原因。有時蛋白會因其本身的一些特性（構象差異）而影響濃縮效果，建議選用上一分子量級別的超濾管（如原本選用30K，此時可以選擇10K）。
2）如果目的樣本也不在濾過液中，那么：a）蛋白樣本起始濃度是否大于25ug/ml？b）用來確定樣本濃度的方法是什么？是否可信？ c）目的蛋白是不是沉淀了？如果是，具體解決方法請參考上面的關于蛋白沉淀問題的解釋。
十：有時候用超濾離心管連水都離不下來，可能是什么原因？
超濾離心管超濾膜中含有微量甘油。如果出現這種情況，請先用0.1N NaOH清洗再離心。*后用緩沖液或Milli-Q水再次清洗后甩干。清洗后的濾膜應立即使用，如暫時不用，請保持潤濕狀態，避免重新干燥。
十一：說明書推薦在室溫下進行離心，考慮到蛋白的穩定性，是否可以在4 攝氏度進行離心?
可以,但是低溫會增加蛋白樣品的粘性,導致流速減慢,建議可將離心時間延長到原來的1.5倍。
十二：如何對超濾離心管進行去除內**的處理？
提供的超濾離心管是沒有經過去內**處理的，同時由于內**通常以多聚體的形式存在，大小在10-1000KD之間不等，在超濾的過程中是無法去除的。可以實驗前通過先用0.5M NaOH預清洗，隨后用Milli-Q水/緩沖液清洗的步驟去除大部分內**。關于針對Amicon Microcon Centricon嘗試過的內**去除方案，請垂詢默克密理博技術專線。
十三：用濃縮后的蛋白做下游分析時發現有干擾，可能有哪些原因？
密理博超濾膜含有微量甘油。如果此成分干擾分析，可用緩沖液或Milli-Q水預清洗。如果干擾仍存在，用0.1N NaOH清洗，然后用緩沖液或Milli-Q水再次清洗后甩干。
十四：懷疑濃縮過程中目的蛋白和超濾膜之間可能存在非特異性吸附，如何改善？
密理博超濾離心管使用的是再生纖維素膜，這種材質是蛋白吸附*低的超濾膜。但是對于一些疏水性蛋白或非極性蛋白，它們和膜的非特異吸附可能會增強，對于這種情況，可以嘗試在實驗前對超濾管進行封閉處理，也可以嘗試換成Amicon Ultra0.5或2來進行實驗，通過減小膜面積來降低非特異性吸附。